病毒包裝是生物醫(yī)學(xué)研究中的一大利器。通過病毒我們可以高效地讓我們要研究的基因在目標細胞中過表達或者特異性地敲低細胞中的目標基因�？蒲兄杏玫降牟《局饕�有慢病毒、腺病��、腺相關(guān)病毒。根據(jù)各種病毒不同的特性，不同的課題需要包裝不同的病毒。比如，腺相關(guān)病毒更適合進行動物在體研究。腺病毒具有包裝容量大、適合在體研究等有點。

生物醫(yī)學(xué)科研中使用得最多的是慢病毒，慢病毒具有外源基因容量大、目的基因整合穩(wěn)定表達、可同時感染分裂和非分裂細胞、轉(zhuǎn)染效率高的特點，已經(jīng)廣泛應(yīng)用于基礎(chǔ)科研、臨床研究中。

1、預(yù)實驗的重要性

文獻報道或他人經(jīng)驗中的MOI（感染復(fù)數(shù)，毒粒與被感染細胞的數(shù)量比值），不僅取決于病毒對細胞本身的親噬性，而且受到不同來源重組病毒滴度測定誤差、使用保存過程損失、具體細胞狀態(tài)、傳代次數(shù)、細胞密度、具體實驗操作等方面的影響。完全照搬MOI可能并不能達到最佳效果。

傳代細胞系、原代細胞等材料，實際狀態(tài)在各個實驗室也會存在一定差異。預(yù)實驗的目的是找出能夠達到最高感染效率、同時細胞狀態(tài)未受到明顯影響的一個恰當病毒用量。

2、預(yù)實驗安排

設(shè)置不同MOI值的感染組�？稍O(shè)立5、10、20、50的感染復(fù)數(shù)梯度，各兩孔，一孔加入終濃度為5 ug/ml的polybrene，另一孔不加。如果只需通過熒光顯微鏡觀察，則使用96孔板即可。如需做Real-time PCR或流式檢測則至少使用24孔板。在6 h、12 h、24h左右觀察總結(jié)感染細胞狀態(tài)，在72 h左右檢測感染效率及表達水平。如為RNAi需檢測蛋白水平下調(diào)可進一步延遲24 h。

如果有文獻報道的MOI值，可使用該值的0.5x、1x、2x、4x進行測試。如使用較難感染的細胞進行實驗，建議設(shè)置易感染細胞組如293、Hela、A549等作為陽性對照。

為了便于實驗應(yīng)用，且培養(yǎng)體系中的實際細胞數(shù)量存在計數(shù)誤差，用量預(yù)實驗的結(jié)論可總結(jié)為一定培養(yǎng)規(guī)模（如96孔板、6孔板）下、一定細胞密度時（如60%）、原始毒液加入體積（如5 μl）。當需要放大或縮小實驗體系時，可根據(jù)培養(yǎng)面積（對應(yīng)細胞數(shù)）按比例換算得出病毒用量。

3、感染方法（以24孔板為例）

第一天，準備感染細胞。在24孔板中接種目的細胞約5x10⁴/孔，每孔培養(yǎng)基體積0.5 ml。目的細胞的狀態(tài)對于感染及表達非常重要。第二天，凍存待用的病毒于冰上融化，如需稀釋毒液可以用培養(yǎng)基進行稀釋（基礎(chǔ)培養(yǎng)基或完全培養(yǎng)基均可，血清、雙抗不影響病毒感染）。觀察前一天準備的細胞，狀態(tài)良好，進行病毒感染時細胞的匯合度約為50-60%左右。

按滴度計算毒液所需的用量。如原始滴度為1x10⁸ TU /ml，每孔擬病毒用量為0.5x10⁶ TU，則需要使用原液5 ul。將所需用量的毒液加入完全培養(yǎng)基（500ul）、混勻，吸除孔板中原培養(yǎng)基，加入混合毒液的培養(yǎng)基。放于二氧化碳培養(yǎng)箱（37℃、5%CO₂）孵育培養(yǎng)。根據(jù)細胞狀態(tài)更換培養(yǎng)基，如狀態(tài)良好可在12-16h更換培養(yǎng)基，病毒孵育時間不短于4 h。需要使用polybrene時，在孵育培養(yǎng)基中先于毒液加入例如5 μg/ml終濃度的polybrene混勻。

按照正常培養(yǎng)基條件繼續(xù)培養(yǎng)48-72 h后可檢測感染效率。在倒置熒光顯微鏡觀察熒光，估計慢病毒感染目的細胞的效率。如載體未攜帶標記基因的，可以通過Real-time PCR檢測目的基因表達。慢病毒表達產(chǎn)物在72-96 h左右接近高峰，如細胞生長代謝緩慢需適當延長時間，生長旺盛的細胞在48 h即可觀察基因表達。

4、實驗參考信息

（1） 常用細胞系參考MOI值

（2）常用培養(yǎng)器皿使用參數(shù)